sábado, 19 de noviembre de 2011

*TÉCNICAS MACROSCÓPICAS COPROPARASITOSCOPICAS “TAMIZADO”

SEP                      SEM                        DGETI

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199


PRACTICA

TÉCNICAS MACROSCÓPICAS COPROPARASITOSCOPICAS “TAMIZADO””

ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ


3º DM LAB CLÍNICO


DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO

OBJETIVO

Aprender a realizar la técnica de tamizado con el fin de localizar parasitos en heces fecales, todo ello enfocado en el aprendizaje de helmintos que hemos estado estudiando durante las clases pasadas.



FUNDAMENTO

La técnica de tamizado permite observar directamente las característicasmorfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados. tal es el caso de loshelmintos.
Después de la expulsión espontánea de proglótidos, estos se puedenrecuperar por medio de la técnica de TAMIZADO en heces expulsadas durante 24horas. En caso de obtenerse proglótidos, deben comprimirse entre dosportaobjetos y observarlos a contraluz o en un microscopio.
Mediante el TAMIZADO de las heces también es posible recuperar el escólex, sobre todo después de los tratamientos, el cual se observará bajo el microscopio para determinar sus características morfológicas.


MATERIAL:
·         Coladera de tamiz fino
·         Abatelenguas
·         Caja petri
·         Pinzas
SUSTANCIAS:
·         Muestra de heces fecales
·         Solución salina

PROCEDIMIENTO


1)    Colocar pequeñas cantidades de materia fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.




2)    Dispersar la muestra  con el abatelenguas y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posibles.



3)    Revisar cuidadosamente  las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.


4)    Los parásitos encontrados colocarlos en una caja petri con solución salina
5)    Se identifica la parte del parasito o el parasito completo

6)    Se reporta el género y la especie del parasito o parte del parasito.

RESULTADOS

Desafortunadamente en este caso no logramos identificar un parasito de los que hasta el momento hemos estudiado, únicamente a la ora de pasar el tamiz de la coladera a la caja petri con solución salina observamos fibras de comida que no se digirió por completo, principalmente de chile y  jitomate, así como las semillas de los mismos. Aun así tomamos una muestra de lo que nos pareció propicio para analizar al microscopio y los resultados son los siguientes.
                                                   Restos de comida no digerida





                                                   Posibles proglotidos segmentados.






                                                      Fibras de comida no digerida



CONCLUSIÓN
 Tal vez no se pudo observar de manera directa algún parasito pero lo positivo de esto es que se aprendió una nueva técnica coproparasitocopica rápida y a la vez muy fácil de hacer, la cual nos permite identificar helmintos posiblemente contenidos en la materia fecal de los pacientes.

Fuentes consultadas:
www.scribd.com/.../MANUAL-DE-LABORATORIO-DE-PARASITOLOGIA

 

“METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS”

S.E.M.S                           DGETI

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199


PRACTICA 6

METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS

ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ


3º DM LAB CLÍNICO




DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO



 “METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS”

INTRODUCCION:
En este método se utiliza solución saturada de cloruro de sodio para preparar la materia fecal, que como ya sabemos contiene los huevos y quistes de protozoarios y helmintos. Estos al tener un peso específico menor a la solución saturada de cloruro de sodio suben y se adhieren a un cubreobjetos que se encuentra en contacto con la superficie del líquido.

OBJETIVO:
Observar los quistes y huevecillos del frotis realizado con el Método de Willis.
De peso liviano.

MATERIAL:                                                 REACTIVOS:
-Vaso de precipitado.                             –Sol. Saturada de NaCl.
-Embudo.                                                –Sol. De yodo-lugol.
-Gasa.
-Tuvo de ensaye.
-Portaobjetos.
-Cubreobjetos.
PROCEDIMIENTO:
1.-En un vaso de precipitado colocar 10 ml. de sol. Saturada de cloruro de sodio y mezclar  aproximadamente  1 gr. de heces fecales

2.-Filtrar la mezcla con la gasa colocada en el embudo, pasando el líquido a un tubo de ensaye y llenándolo por completo.

3.-Colocar el cubreobjetos sobre el tubo, de manera que tenga contacto con el líquido, esperar de 5 a 10 min.

4.-Colocar una gota de yodo lugol en el portaobjetos. Retirar el cubreobjetos del tubo (con mucho cuidado para no tener pérdidas del material) y ponerlo sobre el portaobjetos.
5.-Observar la muestra al microscopio con el objetivo de 10x. Y si se observa algo interesante cambiar a objetivo 40x.
RESULTADOS:
Las siguientes son imágenes de lo que se observo en diferentes muestras:
            En el campo de las 6 se observo un quiste de hentamoeba histolytica, aunque por    la definición de la imagen no se distingue muy bien.
                                      En otra muestra observada, se localizaron gotas de grasa.
Conclusión:
Al final de la práctica considero muy fácil de realizar, además con este  podemos  encontrar los huevos nematodos que son los parásitos humanos más comunes y son muy frecuentes en las regiones tropicales y subtropicales con condiciones precarias higiénicas.
Este método se basa en que los huevos y quistes de peso especifico menor que la solución saturada de cloruro de sodio que tiene una densidad de 1200 y por ello permiten la flotación de los huevos y quistes mas ligeros que el medio por lo que no pueden subir parásitos mas pesados
Referencias: