PUNCIÓN VENOSA

S.E.M.S                                               DGETI

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199

PRACTICA No. 2

“PUNCIÓN VENOSA”

ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ

“REALIZAR BIOMETRÍA HEMÁTICA”

4º DM LAB CLÍNICO

DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO

 

v OBJETIVO

Realizar una extraccion de muestra sanguinea de la parte venosa, con las medidas de seguridad adecuadas, de manera correcta, y todo con el firme proposito de experimentar, practicar y sobre todo mejorar esta tecnica  teniendo asi un fundamento teorico y practico que permitan al alumno conocer las funciones que tiene este tipo de sangre, es decir en que casos es necesaria este tipo de estraccion, asi como los tipos de analisis que se le pueden practicar.

Riesgos

Las venas y las arterias varían en tamaño de un paciente a otro y de un lado del cuerpo a otro, razón por la cual extraer sangre de algunas personas puede ser más difícil que de otras.

Otros riesgos asociados con la extracción de sangre son leves, pero pueden ser:

·         Sangrado excesivo

·         Desmayo sensación de mareo

·         Hematoma (acumulación de sangre debajo de la piel)

·         Infección (un riesgo leve cada vez que se presenta ruptura de la piel)

Nombres alternativos

Extracción de sangre; Flebotomía

 

v FUNDAMENTO

Las 2 fuentes de sangre para el estudio en el laboratorio de Hematología son la sangre venosa y la capilar, aunque es posible que se requiera sangre arterial para realizar procedimientos como el análisis de gases sanguíneos, éste procedimiento no suele realizarse en el laboratorio de hematología

Ventajas de una extracción de sangre venosa

Ø  Por la cantidad que es posible extraer, se pueden repetir los examenes con la misma muestra.

Ø  Parte de la muestra (plasma o suero) puede congelarse para referencia futura.

Desventajas de una extracción de sangre venosa

Ø  La persona que realiza esta tecnica requiere de sierta preparacion para no cometer errores.

Ø  Esta tecnica puede ser de sierta dificultad al ser practicada en niños, personas obesas, asi como de las que se encuentran en shock

Ø  Si la sangre se hemolisa puede alterar gravemente los resultados en caso de un conteo de eritrocitos.

Ø  Algunos anticoagulantes producen cambios en las plaquetas que pueden causar aglutinaciones, agregación plaquetaria y dificultan la identificación de leucocitos.

Ø  Los recuentos de leucocitos y plaquetas e índice de sedimentación deben realizarse antes de que pasen dos horas desde que se obtuvo la muestra.

v MATERIAL:

 

·         Algodón.

·         Alcohol al 70%.

·         Torniquete

·         Jeringas de 5 ml. O bacutainer.

·        Tubos con anticoagulante EDTA.

·         Tubos sin Anticoagulante

·         Portaobjetos

 

v PROCEDIMIENTO

 

1.-Hacer un recuento de los materiales a utilizar, para evitar una distraccion en caso de que algo haga falta, y pueda verse afectada la tecnica, asi mismo indicarle la posicion del pasiente para que se sienta comodo.

2.-Sujetar con un medio nudo el torniquete  aproximadamente cuatro dedos por encima de la flexión del codo o a 10 cm del codo.

3.-Realizar asepxia en el area seleccionada, con ayuda de una pequeña torunda alcoholada hecha de algodón.

4.-El paciente deberá abrir y cerrar la mano durante unos segundos y después la mantendrá cerrada, esto ayudará a visualizar las venas superficiales.

 

5.-Se coloca la aguja en dirección paralela a la vena con el bisel hacia arriba, se perfora la piel haciendo avanzar la aguja 0.5-1 cm en el tejido subcutáneo, luego se perfora la vena.

6.-Se aspira la jeringa hasta el volumen requerido.

7.-Retirar el torniquete e indicar al paciente que deje de hacer fuerza en el puño. Se coloca el algodón seco encima de la punción y se retira la aguja.

8.-Retirar la aguja de la jeringa. Verter la muestra lentamente por las paredes del tubo con anticoagulante. No olvidar colocar una gota en la lámina portaobjeto para realizar el frotis.

 

9.-Agitar el vial en círculos sobre la mesa para homogeneizar la muestra con el anticoagulante.

v RESULTADOS

Con una gota de la sangre extraida se realizo un frotis sanguineo con la tincion de wright, al cuale pertenecen las siguientes imágenes que se obtubieron como evidencia de los resultados.

Celulas sanguineas “eritrocitos”

100x

En círculos rojos podemos observar algunos  poiquilocitos.

v CONCLUSIÓN

Durante la realizacion de la flebotomia, nos dimos cuenta que es de suma importancia hacer las cosas con tranquilidad, y con el mayor cuidado posible, ya que como se sabe de esto depende la impresión  que el pasiente se yebe de quien lo atiende y por ello del laboratorio en el que esta confiando los resultados de sus analisis. Es por ello que esta tecnica se debe de realizar con frecuencia para tener práctica, y con ello realizar todo de una manera adecuada.

v FUENTES DE CONSULTA

·         Venopunción: MedlinePlus enciclopedia médica consultado en

www.nlm.nih.gov/medlineplus/spanish/ency/article/003423.htm el dia 4 de marzo de 2012

                         

PUNCIÓN CAPILAR

S.E.M.S                                               DGETI

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199

PRACTICA No. 1

“PUNCIÓN CAPILAR”

ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ

“REALIZAR BIOMETRÍA HEMÁTICA”

4º DM LAB CLÍNICO

DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO

 

v OBJETIVO

Realizar de manera correcta una puncion capilar, asi como identificar en que casos es necesaria su utilizacion en un estudio de laboratorio.

v FUNDAMENTO

El sistema circulatorio se conforma principalmente por los llamados vasos sanguineos de los cuales podemos identificar tres tipos, diferenciandolos unos con otros por su tamaño asi como por el tipo de sangre que trasportan, los cuales son: venas, arterias y capilares. En esta ocacion se ablara de estos ultimos, por ser el tema principal de nuestra practica.

Los capilares son conductos sumamente delgados que se entrelazan formando redes entre las arterias y las venas. Están constituidas por una sola capa de células epiteliales planas (endotelio) que les permite ser muy permeables.

La punción capilar o cutánea recoge la sangre capilar que llega de las arteriolas, vénulas y capilares, mediante una microherida, en la epidermis, practicada con una aguja o lanceta. La composición de esta sangre es más parecida a la arterial que a la venosa.

Esta punción permite recojer  una cantidad muy pequeña de sangre.

La sangre capilar la podemos obtener de tres partes del cuerpo según las codiciones del pasiente:

ü  De la cara lateral del dedo medio o anular en los adultos

ü  Del lóbulo de la oreja en niños

ü  del dedo gordo del pie o talón en los niños.

v MATERIAL:

·          Lancetas desechables y estériles

·          Tubos capilares

·          Portaobjetos

·          Pipetas Pasteur

·          Algodón.

·          Pizeta

v SUSTANCIAS:

·         Colorante de Wright

·         Buffer de fosfato

v PROCEDIMIENTO

1. Limpiar con una torunda humedecida en alcohol el area del dedo pulgar. Frotar de abajo hacia arriba el dedo, de manera que la sangre se acumule en la parte superior de este.

2. Punzar la piel del dedo, en un solo movimiento firme y rapido.

3.  Se desecha la primera gota de sangre, y la o las posteriores se colocan sobre un portaobjetos en la parte lateral

4. colocar otro portaobjetos por delante de la gota en un angulo de 30 a 45º y dejar que la sangre se extienda en el angulo formado por los dos portaobjetos, empujar el segundo porta a una velocidad constante hacia el otro extremo

.      El siguiente paso consiste en realizar la tincion de wright que nos permitira observar celulas sanguineas principalemte a los eritrocitos.

      6. realizar las observaciones correspondientes con ayuda del microscopio.

v OBSERVACIONES

Esta imagen muestra una gran cantidad de eritrocitos 10 x

En esta imagen se observan mas claramente a los eritrocitos, de los cuales algunois de ellos presentan defromidades de forma (poiquilositosis) 100 x

Frotis 100x En el centrodel campo se enfoco a un eutrófilo al que se le puede distinguir con sierta claridad su nucleo. Recordemos que las caracteristicas de los neutrofilos en una tincion de Wright son: nucleo color purpura, granulos lila-marron y el citoplasma rosa palido.

v RESULTADOS

De sierta forma la finalidad o el proposito de esta practica no era realizar un diferencial de celulas sanguineas si no aprender a realizar una puncion capilar, aun asi pudimos darnos cuenta de que como se menciono anteriormente, las celulas mas vistosas, o que se observavan con mayor claridad fueron los eritrocitos, los cuales son de color rosa-salmon, con el centro mas palido.

v CONCLUSIÓN

Una puncion capilar es de suma importancia dentro del laboratorio. Su realizacion puede parecer muy sencilla, pero los más importante es saber identificar en que casoso se debe de practicar, cuales son sus pro y cuales son sus contras.

Sabemos que se recurre a una puncion capilar por distintos motivos, entre los cuales destacan los siguientes: en caso de los niñños, cuando no se es posible notar las venas, en las situaciones de quemaduras graves, asi como en personas en tratamiento de quimioterapias (cancer) a las que por esto las venas se les buelben fibrosas.

Ciertas ventajas que este procedimiento tiene en algunos caso se pueden volver desbentajas, es decir, en los caso de repeticion del estudio es necesario volver a obtener la muestra, los resultados obtenidos con este tipo de sangre no se pueden comparar con los de sangre obtenidos de una venas, ademas de que para algunas personas con enfermedades que disminuyen la resistencia a infecciones, es mas facil que el dedo se les infecte a que si la muestra fuera obtenida del brazo.

 

v FUENTES DE CONSULTA

      Muestra capilar: MedlinePlus enciclopedia médica, documento  consultado el día 19 de febrero de 2012 en: www.nlm.nih.gov/medlineplus/spanish/ency/article/003427.htm

      Punción capilar, documento pdf, consultado el día 19 de febrero de 2012 en: http://www.enfervalencia.org/ei/80/articulos-cientificos/6.pdf

*TÉCNICAS MACROSCÓPICAS COPROPARASITOSCOPICAS “TAMIZADO”

SEP                      SEM                        DGETI

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO Industrial y de Servicios No. 199

PRACTICA

TÉCNICAS MACROSCÓPICAS COPROPARASITOSCOPICAS “TAMIZADO””

ALUMNO: VÍCTOR MANUEL MERA ÁLVAREZ

3º DM LAB CLÍNICO

DR. VICENTE MARTÍNEZ FRAGOSO

OBJETIVO

Aprender a realizar la técnica de tamizado con el fin de localizar parasitos en heces fecales, todo ello enfocado en el aprendizaje de helmintos que hemos estado estudiando durante las clases pasadas.

FUNDAMENTO

La técnica de tamizado permite observar directamente las característicasmorfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados. tal es el caso de loshelmintos.

Después de la expulsión espontánea de proglótidos, estos se puedenrecuperar por medio de la técnica de TAMIZADO en heces expulsadas durante 24horas. En caso de obtenerse proglótidos, deben comprimirse entre dosportaobjetos y observarlos a contraluz o en un microscopio.

Mediante el TAMIZADO de las heces también es posible recuperar el escólex, sobre todo después de los tratamientos, el cual se observará bajo el microscopio para determinar sus características morfológicas.

MATERIAL:

·         Coladera de tamiz fino

·         Abatelenguas

·         Caja petri

·         Pinzas

SUSTANCIAS:

·         Muestra de heces fecales

·         Solución salina

PROCEDIMIENTO

1)    Colocar pequeñas cantidades de materia fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.

2)    Dispersar la muestra  con el abatelenguas y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posibles.

3)    Revisar cuidadosamente  las partículas de las heces que hayan quedado en la coladera.

4)    Los parásitos encontrados colocarlos en una caja petri con solución salina

5)    Se identifica la parte del parasito o el parasito completo

6)    Se reporta el género y la especie del parasito o parte del parasito.

RESULTADOS

Desafortunadamente en este caso no logramos identificar un parasito de los que hasta el momento hemos estudiado, únicamente a la ora de pasar el tamiz de la coladera a la caja petri con solución salina observamos fibras de comida que no se digirió por completo, principalmente de chile y  jitomate, así como las semillas de los mismos. Aun así tomamos una muestra de lo que nos pareció propicio para analizar al microscopio y los resultados son los siguientes.

                                                   Restos de comida no digerida

                                                   Posibles proglotidos segmentados.

                                                      Fibras de comida no digerida

CONCLUSIÓN

 Tal vez no se pudo observar de manera directa algún parasito pero lo positivo de esto es que se aprendió una nueva técnica coproparasitocopica rápida y a la vez muy fácil de hacer, la cual nos permite identificar helmintos posiblemente contenidos en la materia fecal de los pacientes.

Fuentes consultadas:

www.scribd.com/.../MANUAL-DE-LABORATORIO-DE-PARASITOLOGIA